有用過His-tag進(jìn)行蛋白純化的人,或多或少都有這樣的經(jīng)驗(yàn) : 蛋白純度低、純化出來的蛋白失去原有結(jié)構(gòu)或功能受到影響、難以從哺乳類細(xì)胞表達(dá)系統(tǒng)中純化出目標(biāo)蛋白…等,因此科學(xué)家開始嘗試以不同親和標(biāo)簽進(jìn)行蛋白純化。因?yàn)镾trep-tag系統(tǒng)的純化過程溫和、目標(biāo)蛋白純度高,且相容于多種表達(dá)系統(tǒng)的特性,愈來愈受到大眾的歡迎。但是,你知道Strep-tag這個(gè)純化系統(tǒng)是怎么發(fā)展而來的嗎? 這得從功能性抗體開始說起…
功能性抗體的出現(xiàn)
隨著生物制藥技術(shù)的發(fā)展,抗體也因此成為科學(xué)家研究的熱門領(lǐng)域。但在80年代初,功能性抗體的表達(dá)一直是個(gè)問題,酵母表達(dá)系統(tǒng)中表達(dá)出來的蛋白只有部分具有功能,在其他的微生物表達(dá)系統(tǒng)中,也沒有成功的先例。一直到80年代末,一個(gè)具有功能性的McPC603抗體的Fv片段終于成功的在E. coli中被表達(dá)出來1。這一方法的出現(xiàn),使得科學(xué)家能更快速的表達(dá)具有不同基因變異的抗體片段,并能對(duì)這些變異所引發(fā)的功能改變進(jìn)行檢視。
抗體純化沒有想象中那么簡(jiǎn)單
更高能的短肽標(biāo)簽呼之欲出
要解決這些問題,科學(xué)家需要找出一個(gè)具備以下功能的短肽簽。
1.能被融合到目標(biāo)蛋白上,且不會(huì)影響蛋白功能
2.能直接以現(xiàn)有試劑偵測(cè)出來
3.與配體的結(jié)合穩(wěn)定、特異性高且容易控制。
經(jīng)過一番搜索,發(fā)現(xiàn)鏈霉親和素(Streptavidin)在特定情況下,能與不同短肽進(jìn)行可逆性的結(jié)合,再加上其與生物素(biotin)極高的親合力,且與背景蛋白的非特異性結(jié)合機(jī)率低,鏈霉親和素已被應(yīng)用在許多檢測(cè)系統(tǒng)中,甚至能做為一個(gè)穩(wěn)定的介質(zhì)來固定蛋白。另外,鏈霉親和素在不同溶液條件中穩(wěn)定性好,較抗體來的高,所以能夠重復(fù)被利用。因此,90年代初,科學(xué)家開始尋找一個(gè)能與鏈霉親和素特異性結(jié)合的親和標(biāo)簽2。
終于找到了第一代Strep-tag系統(tǒng) : Strep-tag vs Streptavidin
因先前已知可用E.coli系統(tǒng)表達(dá)出具有功能性的Fv片段1,科學(xué)家又希望能確認(rèn)標(biāo)簽是否會(huì)影響蛋白功能,所以選擇了已知的D1.3抗體Fv片段做為實(shí)驗(yàn)?zāi)P?,以便檢測(cè)加上的短肽標(biāo)簽是否影響了這片段與其抗原結(jié)合的特性3。接著,一連串能與鏈霉親和素結(jié)合的標(biāo)簽被接到VH domain上,大量篩選之后,得到了一個(gè)適用于進(jìn)行一步純化的Strep-tag (Trp-Arg-His-Pro-Gln-Phe-Gly-Gly) 3,與生物素相比,Strep-tag和鏈霉親和素間的親和力較低,因此可以使用生物素衍生物Diaminobiotin,在生理?xiàng)l件下進(jìn)行溫和洗脫。又因整個(gè)純化流程溫合,含鹽濃度低,純化出來的 Fv片段完整且功能不受影響3。除此之外,這個(gè)標(biāo)簽還能被應(yīng)用在Western blot或ELISA實(shí)驗(yàn)中,以鏈霉親和素酶偶聯(lián)物(Streptavidin-enzyme conjugates)來檢測(cè)純化出的Fv片段。后續(xù)也測(cè)試了以Strep-tag來純化抗體以外蛋白的可能性,證實(shí)了這個(gè)一步純化系統(tǒng)可以被廣泛使用在不同類型的蛋白上3。
因?yàn)椴煌昝?,所以有了第二?nbsp;: Strep-tag II vs Strep-Tactin?
但Strep-tag僅能接在目標(biāo)蛋白的C端,對(duì)于需將標(biāo)簽接在N端或是蛋白內(nèi)部的實(shí)驗(yàn),非常的不實(shí)用。因此科學(xué)家進(jìn)一步優(yōu)化了這個(gè)標(biāo)簽,便有了現(xiàn)在被廣泛使用的Strep-tag II (Trp-Ser-His-Pro-Gln-Phe-Glu-Lys)4。但即便足以用于蛋白純化,科學(xué)家對(duì)Strep-tag II與鏈霉親和素的結(jié)合強(qiáng)度低這點(diǎn)仍不甚滿意,因?yàn)樵诒容^特殊的純化條件中效率會(huì)受影響。于是進(jìn)行了鏈霉親和素的改造,發(fā)展出Strep-Tactin?。Strep-Tactin?:Strep-tag II的親和力較Streptavidin:Strep-tag II提升了近100倍,這個(gè)改變使得洗脫時(shí)需改用脫硫生物素(Desthiobiotin) 5,但過程一樣溫合。這就是二代Strep-tag系統(tǒng),在過去近20年間,逐漸被廣泛應(yīng)用于純化或偵測(cè)蛋白質(zhì)中,甚至發(fā)展出細(xì)胞分離檢測(cè)的方法6。
總覺得還能更好,一起看看第三代 : Twin-Strep-tag vs Strep-Tactin?XT
即便親和力已提升,在某些狀況下,Strep-Tactin?使用仍有所限制,尤其是在需要極高親和力的應(yīng)用之中,例如檢測(cè)蛋白質(zhì)間的交互作用、或是從目標(biāo)蛋白濃度低的樣本中進(jìn)行純化。因此科學(xué)家利用總結(jié)合力(Avidity)的原理,將兩個(gè)Strep-tag II以Linker連接在一起 : Twin-Strep-tag 7。這一新標(biāo)簽的出現(xiàn)再度提升了目標(biāo)蛋白與Strep-Tactin?的鏈接強(qiáng)度,改善了低濃度樣本純化效果8,還能用于抓取蛋白復(fù)合體、檢測(cè)蛋白間的交互作用7, 9。
美中不足的是,Strep-Tactin?在變性條件下并不穩(wěn)定(例如:使用尿素時(shí)),無法進(jìn)行純化,且進(jìn)行批量純化時(shí),即使搭配Twin-Strep-tag,效果仍有改善的空間。為此,科學(xué)家再次改造了Strep-Tactin?,得到與Twin-Strep-tag親和力更上一層樓的Strep-Tactin?XT (XT意指extreme tight) 10。經(jīng)過這次的優(yōu)化,科學(xué)家首次創(chuàng)造出一個(gè)純化系統(tǒng),其中標(biāo)簽與配體的鍵結(jié)力幾近共價(jià),但鏈結(jié)仍保持可逆 (注:Strep-tag II也能與Strep-Tactin?XT結(jié)合)。因親和力的增加,即使經(jīng)過多次清洗步驟,蛋白也不會(huì)從Strep-Tactin?XT上解離,提高了目標(biāo)蛋白的得率。需注意的是,洗脫步驟必須使用生物素,但是整個(gè)純化流程與前幾代一樣溫合,純度超過95%,這就是 新一代Strep-tag系統(tǒng)。用Strep-Tactin?XT來純化時(shí),得率及純度都提高;且Twin-Strep-tag搭配后還能用在Biacore芯片11, 12、微量滴定板或ELISA中來固定蛋白,進(jìn)行后續(xù)檢測(cè),是一個(gè)多用途的親和標(biāo)簽系統(tǒng)。
心動(dòng)不如行動(dòng),快來體驗(yàn)Strep-tag純化系統(tǒng)
產(chǎn)品介紹請(qǐng)見https://www.iba-lifesciences.com/lp-streptactinxt-cn.html
Strep-tag與His-tag系統(tǒng)的比較
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參考文獻(xiàn)
IBA Lifesciences公司簡(jiǎn)介
IBA Lifesciences(德國)是后基因組時(shí)代表達(dá)克隆和蛋白質(zhì)純化技術(shù) 重要的供應(yīng)商之一。該公司的產(chǎn)品線分成三部分:一是開發(fā)了Strep-tag?的通用技術(shù)平臺(tái),可快速、多樣性地生產(chǎn)、純化和使用重組蛋白;二是細(xì)胞分選與擴(kuò)增產(chǎn)品組合;三是定制化核酸合成服務(wù)。